Влияние растительных паразитических нематод на выращивание рисовых культур сочинение пример

ООО "Сочинения-Про"

Ежедневно 8:00–20:00

Санкт-Петербург

Ленинский проспект, 140Ж

magbo system

Сочинение на тему Влияние растительных паразитических нематод на выращивание рисовых культур

Зерновые являются основным источником питания в мире. Среди зерновых культур рис, кукуруза и пшеница являются основными культурами с точки зрения производства, площади и источника питания, особенно в развивающихся странах. Около 70% обрабатываемых земель предназначено для зерновых культур. Прогнозируется, что в 2050 году население планеты увеличится примерно на 9 миллиардов, и в дальнейшем спрос будет увеличиваться на такие основные зерновые культуры, как рис, кукуруза, пшеница и т. Д. (Dixon et al. 2009).

Рис (Oryza sativa L) является членом семьи Graminae и является зерновым зерном, основным источником пищи для большей части населения мира. Наряду с кукурузой рис выращивается в большинстве тропических и субтропических регионов. Рис выращивает около 114 стран мира в Азии, Африке, Центральной и Южной Америке и Северной Австралии. Азия составляет 90% мирового производства риса в Китае, Индии, Индонезии, Бангладеш и Вьетнаме. Существуют различные системы выращивания риса, которые эволюционировали для акклиматизации конкретных сред, таких как орошаемые, богарные равнины, глубоководные, приливно-отливные заболоченные земли и возвышенности. Орошаемый рис является основной и доминирующей растущей системой в мире. В общем объеме производства продовольственного зерна рис составляет 43%, а в общем объеме производства зерна – 46%. Это играет наиболее важную роль в национальном продовольственном зерновом резервуаре. По объему мирового производства урожай риса занимает третье место после пшеницы и кукурузы. В Индии рис занимает первое место среди зерновых по площади и производству. Рис выращивается в большинстве штатов Индии. Западная Бенгалия является самой высокой страной по производству риса, а Тамил Наду обладает самой высокой продуктивностью (Simon and Anamika 2011). В Индии выращивается около 44 млн. Га риса, а годовой объем производства составляет около 110,15 млн. Тонн (Управление экономики и статистики, Департамент сельского хозяйства, сотрудничества и благосостояния фермеров 2017–2018 гг.). Рисовые культуры заражены различными вредителями и болезнями, среди которых несколько растительных нематод заражают рис-хозяин. Растительные паразитические нематоды (PPN), адаптированные к каждой системе выращивания риса с лиственными и корневыми паразитами (Nicol et al. 2011). Лиственные паразиты состоят из Aphelenchoides besseyi и Ditylenchus angustus. A. besseyi – семенная нематода, вызывающая болезнь риса. Симптом, вызванный A. besseyi, представляет собой отбеливание части кончика листа (болезнь Белого кончика), которая превращается в некроз, искажение флагового листа, где заключена метелка. Зараженные A. besseyi растения отстают в росте, снижают энергию и их метелки становятся искаженными, что приводит к образованию мелких зерен (Ou 1985). Другой лиственный паразит, D. angustus (болезнь Уфра), распространен в Юго-Восточной Азии, особенно в низинных и глубоководных системах выращивания риса. Паразиты нематод корня (риса) состоят из мигрирующих эндопаразитов (Hirschmanniella spp.), Сидячих эндопаразитов (кисты и корневых нематод) и нескольких эктопаразитов. Кистообразными нематодами, распространенными в равнинных, нагорных и затопленных системах выращивания риса, являются Heterodera oryzicola, H. oryzae, H. sacchari и т. Д. Корневые нематоды (RKN) являются важными вредителями овощей, фруктов, декоративных растений, других двудольных и немногих однодольные растения. Основными видами RKN являются Meloidogyne incognita, M. javanica, M. arenaria, M. graminicola и др., Широко распространенные в тропиках / субтропиках, тогда как M. hapla в субтемпературном климате. (Sasser 1980; Sasser et al. 1984; Dasgupta and Gaur 1986; Soriano and Reversat 2003; Somasekhar and Prasad 2009). Будучи основной пищевой культурой, рис привлекает все больше внимания со стороны нематологов для изучения физиологического и молекулярного взаимодействия между рисом и PPN с целью повышения урожайности риса во всем мире.

Есть несколько видов RKN, зараженных рисом, и основным видом является Meloidogyne graminicola (RRKN) (Golden and Birchfield, 1965), широко распространенный в Южной и Юго-Восточной Азии, таких как Бирма, Бангладеш, Лаос, Таиланд, Вьетнам, Индия, Китай. и Филиппины (Pankaj et al. 2010) на высокогорных, орошаемых, низинных неорошаемых и глубоководных рисах (Arayarungsarit 1987; Bridge 1990; Bridge and Page 1982; Cuc and Prot 1992; Gaur et al. 1993, 1996; Sharma et al. 2001 ). Социально-экономические факторы и климатические изменения могут привести к увеличению нехватки воды, увеличению себестоимости производства, а также к серьезному ограничению урожайности риса, что создает угрозу для продовольственной безопасности. Производство риса в низменности подняло международную проблему, поскольку традиционная система производства риса-сырца потребляет огромное количество воды в регионе Юго-Восточной Азии; Потребность в воде очень высока, чтобы выдержать этот тип производства риса. В Азии из общего количества 79 млн. Га орошаемого риса, в настоящее время 17 млн. Га страдают от нехватки воды, а к 2025 году ожидается нехватка воды до 22 млн. Га. Поэтому обязательно следует полагаться на систему производства риса, позволяющую экономить воду, такую ​​как прямой влажный посев, прерывистое орошение, приподнятый слой, аэробный рис и многие другие. Но широкомасштабное внедрение этих методов приводит к развитию огромной популяции M. graminicola (Waele and Elsen 2007). M. graminicola очень хорошо усваивается в условиях затопления, позволяя продолжать размножаться в ткани хозяина, даже если корни находятся под водой. Молодь второй стадии M. graminicola проникает в корень риса в нагорных условиях за кончиком корня. Несовершеннолетние не могут проникнуть, когда корни риса находятся в затопленном состоянии, но сразу же проникают, когда почва осушается. Популяции RRKN быстро уменьшаются через 4 месяца, в то время как молодые и многочисленные яичные массы остаются жизнеспособными по крайней мере 5-14 месяцев в заболоченной почве. M. graminicola имеет очень короткий жизненный цикл, завершается в течение 15-20 дней при 22-29⁰C.

<Р> М. graminicola был впервые описан в 1965 году из трав и овса в Луизиане. Эта нематода наносит серьезный ущерб горному, низменному, глубоководному и орошаемому рису. Наиболее заметным симптомом на корне риса являются опухшие и зацепленные кончики корней. Наземные симптомы состоят из задержки роста и хлороза, приводящего к снижению побегов и урожайности. У этой нематоды отсутствуют специфические надземные симптомы, которые недооценивают ущерб, нанесенный землей под землей (Mantelin et al. 2017). Прогнозируется, что потеря урожая зерна из-за M. graminicola в высокогорном рисе составляет около 2,6% на каждые 1000 нематод, присутствующих в ризосфере молодых проростков (Rao and Biswas 1973). Уровень толерантности саженцев риса был определен как менее одной второй стадии ювенильного / см3 почвы в затопленной системе (Plowright and Bridge 1990). Подростки второй стадии (J2) проникают в корень риса за зоной кончика корня, внутри сосудистой ткани и производят типичную питательную клетку, известную как гигантская клетка (GC), действующая в качестве места кормления нематод. Клетки, окружающие GC, становятся гиперплазией и гипертрофированы с образованием макроскопических крючковидных галлов на корневой системе (Kumari et al. 2016). М. graminicola является проблематичным нематодным вредителем системы выращивания рисовой пшеницы на Индо-Гангских равнинах и вызывает значительную потерю урожайности (17-30%). Также это происходит во всех рисоводческих штатах Индии с большими потерями в производстве риса (MacGowan 1989; Jain et al. 2007).

Для борьбы с M. graminicola существуют различные стратегии управления, такие как культурные, биологические, физические, механические и химические методы, которые доступны, но каждый метод имеет определенные ограничения. Среди прочего, химический метод является наиболее эффективным, но из-за химической токсичности, экологических проблем и недостаточного наличия на рынке он имеет ограниченное применение. Соляризация почвы возможна только в небольших масштабах и не рекомендуется в умеренных регионах.

Севооборот – это эффективный вариант, способный эффективно управлять нематодами, который может быть нереалистичным в Юго-Восточной Азии из-за ограниченности земель, выбора урожая, сезонного затопления и приоритета производителей выращивать рис. Поэтому разработка устойчивых к нематодам сортов является наиболее экономичной и устойчивой стратегией управления нематодами. Крайне необходимо искать устойчивый источник для управления M. graminicola. Источники устойчивости были обнаружены у африканского риса, Oryza glaberrima и O. longistaminata по отношению к M. graminicola (Soriano et al. 1999) и изменчивости до определенного уровня, о котором сообщалось и в индийском контексте (Kumari et al. 2016). Дикие родственники африканского риса (O. glaberrima, O. longistaminata и O. rufipogon), которые частично или полностью устойчивы к M. graminicola, могут выступать в качестве устойчивых доноров для межвидовых скрещиваний с азиатскими сортами риса, O. sativa (Plowright et al. 1999 Сориано и др., 1999). Минимальные усилия по размножению были предприняты для разработки устойчивых к нематодам сортов риса (Bridge et al. 2005). Различные подходы и методологии были использованы для поиска источников устойчивости к M. graminicola в рисе. Правильный протокол скрининга, используемый для идентификации устойчивых к нематодам линий размножения, позволит оценивать тысячи генотипов для программы разведения (Boerma and Hussey 1992). Было опубликовано несколько протоколов для поиска источника устойчивости к другим видам нематод корневого узла, таким как M. arenaria, M. incognita, M. javanica и M. hapla в соевых бобах, томатах, картофеле, салате, перце и некоторых других культурах (Hussey and Janssen 2002), но очень ограничен для M. graminicola в рисе и пшенице (Kumari et al. 2016).

Достигнут прогресс в разработке мощных инструментов молекулярной генетики для использования в науках о жизни. Эти методы могут быть использованы для повышения урожайности, устойчивости к абиотическим и биотическим стрессам и качественных характеристик урожая. Разработка различных биотехнологических инструментов коррелирует с признанием полезности местных сортов, диких сородичей и культурных сортов различных видов сельскохозяйственных культур в качестве источника ценных генов для развития устойчивости к нематодам / другим патогенам и бесчисленным признакам агрономической / садоводческой ценности (Yencho et al.). др. 2000). Активирование мечения / инсерционного мутагенеза было сообщено мощной стратегии геномики, чтобы найти новые гены-кандидаты и продемонстрировать изменчивость для определенного признака (Weigel et al. 2000; Moin et al. 2016).

Эта технология может быть одним из благоприятных инструментов для обнаружения устойчивого риса против M. graminicola в рисе. Разработка мутантов риса, активированных Т-ДНК, является потенциальным подходом для создания вариантов с различными фенотипическими признаками. Скрининг мутантов по желаемому фенотипическому признаку и молекулярная характеристика инсерционных последовательностей дают представление о генах, ответственных за внесение изменений в фенотип. Кроме того, этот потенциальный инструмент способен производить огромное количество независимых трансформированных линий с вероятностью мутагенеза с усилением функции. Профилирование с высокой пропускной способностью этих линий мечения активации обеспечивает полезные ресурсы для идентификации генов, которые участвуют в путях регуляции / биосинтеза. T-ДНК-меченые инсерционные мутанты широко использовались для получения знаний и идентификации генов, ответственных за различные признаки риса для биотического и абиотического стресса (Jeong et al. 2002). Среди биотического стресса мутантные линии были большим ресурсом в области бактериальных и грибковых заболеваний (Lin et al. 2004). До настоящего времени не было продемонстрировано полезности вариабельности меченных активацией мутантов для исследования взаимодействия растений с нематодами. Вектор мечения активации pMN20 с четырьмя копиями энхансеров CaMV 35S и EPSPS, модифицированный маркер-селектируемым растительным геном, устойчивым к глифосату, клонировали в pMN20. Полученный бинарный вектор pMN20 EPSPS с энхансерами 4X 35S был использован для разработки трансформантов, которые после интеграции в геном растения-реципиента могут функционировать в любой ориентации, тем самым осуществляя транскрипционную активацию соседних генов, приводящих к определенному фенотипу.

Развитие большого количества мутантов с активационной меткой, достаточных для оценки вариабельности различных признаков, было ограничено на индийском субконтиненте. Основное беспокойство вызывает дефицит стратегий трансформации с высокой пропускной способностью, поддающимися изменению и независимой от генотипа. В этом направлении была разработана апикально-нацеленная на меристему не основанная на культуре ткани стратегия Agrobacterium tumefaciens, опосредованная стратегией трансформации планта для трансформации множества культур, включая рис, для различных признаков (Nagaveni et al. 2011). Преимущество стратегии заключается в способности вырабатывать большое количество трансформантов, при которых полностью исключается этап культивирования ткани. Однако для идентификации предполагаемых трансформантов необходим строгий отбор на основе агента отбора (Shivakumara et al. 2017). Активированные мутанты на фоне превосходящего генотипа риса JBT 36/14 были разработаны с помощью техники трансформации планта (Udaya Kumar personal commun). Этот пул трансформантов является потенциальным источником для выявления любой желаемой черты. Первоначальный скрининг нескольких таких трансформированных рисовых событий показал некоторое сопротивление в отношении M. graminicola (личное сообщение Удая Кумара). Отныне эти помеченные линии активации используются для скрининга на M. graminicola.

Нематоды, взвешенные в PF-127 (плюроник гель), могут свободно перемещаться в трех измерениях в ответ на стабильные химические градиенты, исходящие от корней хозяина. Pluronic гель наиболее подходит для скрининга растений риса против M. graminicola в условиях in vitro. PF-127 представляет собой сополимер пропиленоксида и этиленоксида, который редко токсичен для нематод или тканей растений (Wang et al. 2009; Dutta et al. 2011; Kumari et al. 2016).

Растения-хозяева обычно подвергаются биотическому и абиотическому стрессу, компоненты биотического стресса, полученные из грибов, бактерий, вирусов, насекомых, помимо нематод. Хозяева страдают от любых заболеваний, когда существует взаимодействие между растением-хозяином и патогеном. Успешный патогенез требует прикрепления к растению-хозяину, прокола клеточной стенки, выступающей в качестве физического барьера и, наконец, покорения защитного механизма растения. Существует два типа патогенов: один некротрофный, который питается, убивая клетки-хозяева, а второй – питаясь клеткой-хозяином, не убивая, известный как биотрофный патоген, который живет внутри тканей хозяина. У резистентного хозяина, обладающего потенциалом реагировать на патоген и активировать защитный механизм реагирования против патогена. Модель «зигзаг» объясняет взаимодействие между хозяином и патогеном. При инфицировании патоген-ассоциированные молекулярные паттерны запускают рецепторы распознавания паттернов для активации иммунитета, аналогичного молекулярному патогену, вызывающего иммунитет у растения-хозяина. Эффекторы, выделяемые па …

Зарегистрируйся, чтобы продолжить изучение работы

    Поделиться сочинением
    Ещё сочинения
    Нет времени делать работу? Закажите!

    Отправляя форму, вы соглашаетесь с политикой конфиденциальности и обработкой ваших персональных данных.