Гибридизация флуоресценции in situ: генетическая диагностика и исследования на клеточной основе сочинение пример

ООО "Сочинения-Про"

Ежедневно 8:00–20:00

Санкт-Петербург

Ленинский проспект, 140Ж

magbo system

Сочинение на тему Гибридизация флуоресценции in situ: генетическая диагностика и исследования на клеточной основе

Флуоресцентная гибридизация in-situ (FISH) – это метод молекулярной диагностики, который позволяет визуализировать определенные последовательности нуклеиновых кислот хромосом в клеточном препарате. Он включает использование точного отжига флуоресцентно-меченного ДНК-зонда для комплементарных целевых последовательностей. Таким образом, интересующие гены / последовательности можно наблюдать визуально с использованием флуоресцентного микроскопа. Основными компонентами FISH являются целевая последовательность ДНК и ДНК-зонд. Прежде чем гибридизация может произойти, ДНК-зонд должен быть помечен с использованием различных средств, например: случайное праймирование, ник-трансляция или полимеразная цепная реакция. Для маркировки можно использовать две разные стратегии: прямой метод и косвенный метод.

При непрямой маркировке ДНК-зонд метят измененным нуклеотидом, который содержит гаптен, в то время как используются непрямые метки нуклеотидов, которые были напрямую изменены для содержания флуорофора. Эти флуоресцентно меченные зонды, т.е. зонды FISH сначала денатурируют, а затем комбинация денатурированного зонда и последовательности-мишени позволяет комплементарным последовательностям ДНК отжигаться. Для зондов, которые были помечены косвенно, требуется дополнительная стадия для визуализации нефлуоресцентного гаптена, который часто использует ферментативную / иммунологическую систему обнаружения. Хотя FISH быстрее при использовании зондов с прямой меткой, косвенная маркировка имеет преимущество в усилении сигнала благодаря использованию многочисленных слоев антител, и, таким образом, может иметь место более яркая продукция сигнала по сравнению с фоновыми уровнями.

Благодаря своей способности обнаруживать хромосомные аберрации, такие как перестройка генов, делеция генов и амплификация генов, а также его высокая специфичность; Процедуры FISH широко используются в молекулярной диагностике для выявления и идентификации:

     

  • Центромеры конкретной хромосомы.
  •  

  • Специфичные онкогены (локус-специфический зонд, полезный для (ROS1, ALK), амплификации (HER-2), делеции (CLL) и т. д.).
  •  

  • Специфические гены-супрессоры опухолей (локус-специфический зонд, потеря связана с прогрессированием опухоли)
  •  

  • Цельные хромосомы (полезно для выявления сложных хромосомных перестроек).

Процедуры FISH обычно проводятся на тканевых или клеточных препаратах FFPE (фиксированный формалином в парафине). Преимущества анализа FISH по сравнению с обычным хромосомным анализом заключаются в следующем:

     

  • Можно исследовать большое количество клеток (полезно для выявления остаточных заболеваний)
  •  

  • Метафазные клетки не являются необходимыми, поэтому аберрации также можно обнаружить в неделящихся клетках (полезно при хроническом лимфолейкозе)
  •  

  • FISH может быть выполнен за довольно короткое время
  •  

  • Аберрации, которые слишком тонкие, чтобы быть обнаруженными с помощью обычного цитогенетического анализа, также могут быть идентифицированы

Большинство процедур FISH проводятся в темноте, чтобы избежать обесцвечивания (зонды очень чувствительны к свету). Слайды FISH наблюдаются под флуоресцентным микроскопом, оборудованным фильтрами возбуждения и дихроичного типа, специфичными для зонда. Процедура FISH, выполняемая во время стажировки, выглядит следующим образом:

     

  1. Инкубируйте FFPE (фиксированная формалином парафиновая ткань) при 700 ° C в течение 3 часов. с последующей депарафинизацией в ксилоле в течение 10 минут (дважды)
  2.  

  3. Обезвоживание предметных стекол по 70%, 85% и 100% в течение 3 минут с последующей сушкой на воздухе
  4.  

  5. Погрузите слайды в 0,2 М HCL на 20 минут.

 

  • Погрузите предметные стекла в молекулярную воду с последующим добавлением 2X SSC (цитрата солевого раствора натрия) на 2 минуты каждый
  •  

  • Погрузите слайды в 1 М NaSCN на 30 минут при 800 ° С.
  •  

  • Погрузите предметные стекла в молекулярную воду с последующим добавлением 2X SSC (цитрата солевого раствора натрия) на 2 минуты каждый
  •  

  • Погрузите слайды в 3,5% -ный раствор пепсина при 37 ° С на 10 минут.
  •  

  • Погрузите предметные стекла в молекулярную воду, а затем 2X SSC (цитрат солевого раствора натрия) на 2 минуты каждый.
  •  

  • Погрузите слайды в 10% нейтральный забуференный формалин на 10 минут.
  •  

  • Погрузите предметные стекла в молекулярную воду с последующим добавлением 2X SSC (цитрата солевого раствора натрия) на 2 минуты каждый
  •  

  • Обезвоживание предметных стекол по 70%, 85% и 100% в течение 3 минут с последующей сушкой на воздухе
  •  

  • Добавьте 5 мкл соответствующего зонда на предметные стекла
  •  

  • Инкубируйте слайды в термобрите ©, предварительно установленном для гибридизации
  •  

  • Погрузите слайды в моющие растворы на 3 минуты каждый
  •  

  • Высушите на воздухе в темноте и добавьте 5 мкл DAPI + Antifade
  •  

  • Посмотрите на слайды под флуоресцентным микроскопом.
  • Зарегистрируйся, чтобы продолжить изучение работы

      Поделиться сочинением
      Ещё сочинения
      Нет времени делать работу? Закажите!

      Отправляя форму, вы соглашаетесь с политикой конфиденциальности и обработкой ваших персональных данных.