Сочинение на тему Отчет об экспериментах по легкой инкубации

В первом эксперименте наши результаты подтвердили гипотезу о том, что T. zuluensis по-разному реагирует на воздействие света. Тем не менее, он не рос лучше всего в темноте. Рост возбудителя значительно различался при разных объемах светлой и темной инкубации. Рост при 25% объема света был значительно выше по сравнению со всеми другими интенсивностями света и темнотой при каждой обработке средой (таблица 5). Наши результаты также показали, что существует значительная разница в росте грибков при воздействии различной интенсивности света. Инкубация в разных объемах света показала разный диаметр роста T. zuluensis. Рост был ниже в темноте, а также на 75% света, но выше на 25% объема света. Это указывало на то, что патогену нужен свет, но с ограниченной интенсивностью для быстрого роста. Инкубация в темноте показала самый низкий рост по сравнению со всеми светлыми объемами.

Тем не менее, предпочтения по свету варьируются среди разных грибов, так как некоторые грибы лучше всего растут в темноте, а другие предпочитают условия освещения. Hatakeyama et al. , 2017 обнаружил, что свет оказывал негативное влияние на рост диаметра A. oryzae, а продукция конидий также подавлялась при инкубации на свету. Световой импульс также необходим во многих грибах, чтобы инициировать образование конидий, однако некоторые другие механизмы также участвуют в его регуляции. Аналогично, различные стадии роста также регулируют инициацию конидий и процессы, которые вызывают ферментативную продукцию (Tisch and Schmoll, 2010). Производство биомассы также является другим обязательным параметром, который можно сравнивать при различных условиях освещения в будущих исследованиях, поскольку он также регулируется светом и тьмой (Murthy et al., 2015). В своих исследованиях биомасса A. oryzae в темноте увеличилась на 11% по сравнению со светом. Свет часто убеждает или подавляет образование спор в грибах, и он может по-разному влиять на репродуктивное развитие, рост и метаболизм (Atoui et al., 2010). Помимо эффектов, наблюдаемых на рост в темноте и на свету, он также влияет на баланс питания у грибов (Carlile, 1965).

Наличие / использование субстратов для грибов тесно связано с воздействием солнечного света (Friedl et al., 2008). Регуляция света влияет не только на использование, но и на поглощение субстратов, которые в конечном итоге влияют на весь метаболический процесс в клетке, поскольку в них отсутствуют соответствующие соединения (Hill, 1976). Ограничение этих основных соединений подавляет рост грибов. (Tisch and Schmoll, 2010) привели пример того, что поглощение глюкозы у A. ornatus значительно ингибировалось при инкубации под светом (Hill, 1976), однако оно вызывало образование конидий. Взаимосвязь образования глюкозы и конидии была подчеркнута открытием (Betina and Zajacova, 1978), где более высокие концентрации глюкозы снижают продукцию конидий, однако это не влияет на рост. В других исследованиях (Graafmans, 1976) свет стимулировал синтез полисахаридов в Penicillium isariiforme. Клеточная стенка грибов является первым пятном, которое подвергается воздействию фотонов при освещении (Tisch and Schmoll, 2010).

Несколько исследований выявили, где свет изменял состав клеточной стенки и удваивал количество хитина в A. giganteus по сравнению с инкубацией в темноте (Fiema, 1983). Временное изменение также наблюдалось в структуре клеточной стенки P. blakesleeanus в исследованиях, проведенных Estrella и Herrera, 1983. Рассмотренные примеры и литература, где световой эффект обнаружен у некоторых видов, не могут быть полностью предоставлены или исключены без дальнейших экспериментов на другие виды. В этом эксперименте мы записывали только данные о росте чашек Петри с использованием простой шкалы. Тем не менее, существуют дополнительные возможности исследования этих штаммов для регистрации других параметров, таких как производство биомассы, количество конидий, ферментативные и другие клеточные изменения под действием света. Во втором эксперименте мы успешно применили подход Phenotypic Microarray (PM) к T. zuluensis, чтобы выяснить его предпочтение в отношении питательных субстратов.

Эксперимент показал, что подход PM является полезным инструментом для изучения клеточных фенотипов грибов. Это позволило нам определить степень использования субстрата грибами за определенный период времени. В эксперименте с фенотипическим микрочипом два исследованных штамма грибов T. zuluensis относятся к разным источникам. Южная Африка и Парагвай Р показали одинаковый диапазон использования субстрата, но с разными скоростями использования. Результаты показали, что способность штамма SA катаболизировать субстраты была намного выше по сравнению со штаммом Р. Это указывает на то, что оба штамма способны использовать одинаковое количество источников питания, однако их метаболическая эффективность различна. Штамм SA использовал все субстраты с более высокой скоростью, чем штамм P.